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摘要:為了提高小鵝瘟病毒pcr檢測的檢出率,試驗根據現有的小鵝瘟病毒基因序列,設計合成了1對特異性引物,以實驗室中保存的小鵝瘟病料DNA為模板,對反應程序中的延伸時間、退火溫度等循環參數進行優化,并進行了敏感性和特異性檢測。結果表明:優化后的延伸時間為45s,退火溫度為48.0℃;優化后的方法對小鵝瘟病毒可擴增出大小為550bp的特異性條帶,對照毒株擴增結果均為陰性,其靈敏度為146.00pg/μL。說明優化后的PCR方法特異性強、敏感性高,反應時間明顯縮短。
小鵝瘟(goslingplague,GP)是由細小病毒科、細小病毒屬中的鵝細小病毒(Gooseparvoviruse,GPV)引起的一種雛鵝急性或亞急性的敗血性傳染病。該病主要發生于2周齡以內的雛鵝,具有發病率高、致死率高和傳播速度快等特點。朱堃熹等[1]對40例典型病例進行了系統的病理解剖學研究,結果顯示,該病的主要病變為急性卡他性-纖維素性壞死性小腸炎,可引起小腸梗阻。自1962年方定一[2]及其研究團隊首次發現此病以來,多家研究單位研究和建立了GPV的PCR快速檢測方法[3-6],但其條件未能達到最佳,趙磊等[7]對GPVDNA的提取方法進行了優化,確定以微量法提取GPV核酸最具優勢。本試驗對GPVPCR檢測的延伸時間、退火溫度等循環參數進行了優化,并檢測了特異性和敏感性,現將結果報道如下。
1材料與方法
1.1病毒Ⅰ型鴨病毒性肝炎病毒(DHAV-Ⅰ)、Ⅲ型鴨病毒性肝炎病毒(DHAV-Ⅲ)、鴨瘟病毒(Duckplaguevirus,DPV)、GPV、鴨圓環病毒(Duckcircovirus,DuCV)、番鴨細小病毒((Muscovyduckparvoviru,MDPV)、鴨副黏病毒(Duckparamyxoviru,DPMV)、新型鴨肝炎病毒(NCHV),均由西南大學動物科學學院動物疾病快速診斷中心保存。
1.2主要試劑及儀器DNA提取試劑盒、rTaqDNA聚合酶、DL-2000Marker、TEBuffer,均購自寶生物工程(大連)有限公司;BiodropuLITE分光光度計,由西南大學動物科學學院動物疾病快速診斷中心提供。
1.3引物根據GPV的基因序列,應用PrimerPremier5.0軟件設計1對寡聚核苷酸引物,序列為上游引物5'-CCAAGCTACAACAACCACATCTAC-3'和下游引物5'-CTGCGGCAGGGCATAGACATCCGAC-3',引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。
1.4病毒DNA的提取取西南大學動物科學學院動物疾病快速診斷中心保存的GPV,參照DNA提取試劑盒說明書提取病毒DNA。
1.5PCR檢測方法的建立與優化反應體系:GPVDNA模板3μL,rTaqDNA聚合酶12.5μL,上、下引物各1μL,用7.5μLddH2O補至25μL。對反應程序中的延伸時間、退火溫度等循環參數進行優化,確定最佳反應程序。設定延伸時間分別為15,30,45,60,75,90s;退火溫度分別為38.0,39.8,44.3,47.2,48.0,54.5,61.5,65.0℃。
1.6PCR敏感性檢測用BiodropuLITE分光光度計在OD260/OD280值下測得DNA原濃度為934.37ng/μL,用TEBuffer對原濃度DNA進行10倍梯度稀釋至93.437pg/μL,再對濃度為934.37×10-2ng/μL的DNA進行2倍梯度稀釋,分別測定每次稀釋后的DNA濃度,并各取3μL加到反應體系中進行敏感性檢測。
1.7PCR特異性檢測用優化后的最佳反應程序對DHAV-Ⅰ、DHAV-Ⅲ、DPV、GPV、DuCV、MDPV、DPMV、NCHV的DNA或cDNA進行PCR擴增。
2結果與分析
2.1PCR檢測方法的建立與優化對反應程序中的延伸時間、退火溫度等循環參數進行優化,確定最佳反應程序。
2.1.1延伸時間的篩選保持其他條件不變,設定延伸時間分別15,30,45,60,75,90s進行PCR擴增,結果延伸時間為45s時擴增得到的條帶最亮。
2.1.2退火溫度的篩選保持其他條件不變,設定退火溫度梯度為38.0~65.0℃進行PCR擴增,結果退火溫度為48.0℃時擴增得到的條帶最亮。
2.1.3PCR擴增根據2.1.1和2.1.2的篩選結果確定最佳的反應程序為:95℃預變性5min;95℃變性1min,48.0℃退火1min,72℃延伸45s,共30個循環;72℃再延伸5min,12℃保存。
2.2PCR敏感性檢測
結果顯示,采用10倍稀釋和2倍稀釋的方法可在146.00pg/μL~934.37ng/μL范圍內擴增出清晰的條帶,濃度為93.437pg/μL時未擴增出條帶。說明優化后的PCR方法檢測GPV的靈敏度為146.00pg/μL。2.3PCR特異性檢測結果顯示,優化后的PCR方法能檢測到標準陽性GPV毒株,而對DHAV-Ⅰ、DHAV-Ⅲ、DPV、DuCV、MDPV、DPMV、NCHV均檢測不到特異性條帶。
3討論
小鵝瘟是導致雛鵝死亡的常見疾病之一,可造成巨大的經濟損失,嚴重危害養鵝業的發展。目前,對GPV的檢測技術主要有瓊脂擴散試驗[8-9]、酶聯免疫吸附試驗[10]、免疫酶斑點法[11]、免疫熒光試驗[12]和PCR檢測方法等。隨著分子生物學診斷技術的不斷發展,PCR快速檢測方法省時省力,得到了認可并成為最常用的檢測方式。本試驗利用保存于實驗室的GPV,對已有的小鵝瘟PCR檢測條件進行優化,篩選出反應時間最短、反應效率最高的一組條件,特異性
作者:童艷梅;李嫻妍;陳義旺;馬曉強;顧江風;楊夢琪;劉雨;楊曉偉;趙光偉 單位:西南大學動物科學學院動物醫學系